DOI:10.3969/j.issn.1005-6521.2019.14.009
云oodResearchAndDevelopment食品研究与开发圆园19年7月
第40卷第14期
51
表征与黄花倒水莲多糖的纯化、
体外抗氧化活性研究
张小梅,刘素莲,张锐锐,林冰梅,王晶晶,林家逊*,许有瑞*
(桂林医学院药学院,广西桂林1004)
(polysaccharideofPolygalafallaxHemsl.,摘要:提取纯化黄花倒水莲多糖PFP),对其结构进行表征,并测定其体外抗氧化活性。采用水提醇沉法提取PFP,运用Sevag法除蛋白、活性炭脱色以及G-75葡聚糖凝胶柱层析对其进行纯化分离获得不同的多糖组分。分别用红外光谱(infraredspectrum,IR)、凝胶渗透色谱(gelpermeationchromatography,(highGPC)与1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(1-phenyl-3-methyl-5-pyrazalone,PMP)柱前衍生高效液相色谱最后测定PFP组分对DPPH自由基、performanceliquidchromatography,HPLC)法对PFP组分进行表征分析。羟基自由基、超氧阴离子自由基和ABTS垣自由基的清除率来评价其体外抗氧化活性。经分离纯化得到两种PFP组分(PFP1与PFP2)。其中PFP1的分子量为20794Da,多分散指数为1.32,红外光谱中呈现多糖的典型特征吸收峰,PFP1是由甘露且摩尔比为0.09颐1颐0.48颐糖、半乳糖醛酸、鼠李糖、葡萄糖、半乳糖、阿拉伯糖与一种未知单糖组成的一种杂多糖,性,为今后进行更深入的研究与开发利用提供依据。
0.颐0.71颐0.35。PFP1对4种自由基均有清除能力,且在一定浓度范围内呈正相关。因此PFP在体外具有抗氧化活
关键词:黄花倒水莲;多糖;抗氧化活性;自由基;1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮柱前衍生高效液相色谱
Purification,CharacterizationandinvitroAntioxidantActivityofPolysaccharidesfrom
ZHANGXiao-mei,LIUSu-lian,ZHANGRui-rui,LINBing-mei,
(SchoolofPharmacy,GuilinMedicalUniversity,Guilin1004,Guangxi,China)
粤遭泽贼则葬糟贼:ThepolysaccharideofPolygalafallaxHemsl.(PFP)wasextractedusingthemethodofwaterextractionandalcoholprecipitation.AfterdeproteinizationbySevagmethodanddecolorationbyactivecarbon,pre-columnderivatizationhighperformanceliquidchromatography(HPLC)method.Theresultsshowthatheteropolysaccharideandcomposedofmannose,glucuronicacid,rhamnose,glucose,galactose,arabinoseandwithamolarratioof0.09颐1颐0.48颐0.颐0.71颐0.35.Additionally,invitroantioxidantactivityassaysresearchofPFP.
radicalandABTS垣radicalinadose-dependentmanner,whichcontributestoanintensivedevelopmentandpyrazalonehighperformanceliquidchromatography(PMP-HPLC)
运藻赠憎燥则凿泽:PolygalafallaxHemsl.;polysaccharides;antioxidantactivity;radical;1-phenyl-3-methyl-5-weight-averageMwofPFP1was20794Dawithapolydispersityindexof1.32,anditwasainfraredspectrum(IR),gelpermeationchromatography(GPC)and1-phenyl-3-methyl-5-pyrazalone(PMP)PFP1andPFP2wereobtainedbySephadex-G75columnchromatographygel,andthePFP1wascharacterizedby
WANGJing-jing,LINJia-xun*,XUYou-rui*
PolygalafallaxHemsl.
suggestedthatPFP1presentsscavengingactivitytowardDPPHradical,hydroxylradical,superoxideanion
作者简介:张小梅(1998—),女(汉),本科生,研究方向:中药活性成分的研究与开发。
林家逊(19—)天然产物化学;许有瑞(1980—)*通信作者:,男,高级实验师,研究方向:,男,讲师,博士,研究方向:中药活性成分的研究与开发。
52
引文格式:51-56
张小梅,等:黄花倒水莲多糖的纯化、表征与体外抗氧化活性研究
基础研究
张小梅,刘素莲,张锐锐,等.黄花倒水莲多糖的纯化、表征与体外抗氧化活性研究[J].食品研究与开发,2019,40(14):ZHANGXiaomei,LIUSulian,ZHANGRuirui,etal.Purification,CharacterizationandinvitroAntioxidantActivityofPolysaccharidesfromPolygalafallaxHemsl.[J].FoodResearchandDevelopment,2019,40(14):51-56
黄花倒水莲(PolygalafallaxHemsl.)为远志科远志属灌木或小乔木,又名假黄花远志、黄花参、倒吊黄、吊吊黄、念健、一身保暖、鸭仔兜等,生于山谷林下水旁荫湿处,分布于江西、福建、湖南、广东、广西和云南[1]。其根入药,性平,味甘、微苦,具有补气血、健脾利湿、活血调经之功效[2],可用于治疗病后体虚、腰膝酸痛、跌打损伤、急慢性肝炎,抗衰老等,为瑶、苗、壮等少数民族的常用药物[3-4],也被作为草药中的“党参”、“黄芪”来使用[5]。现代研究表明黄花倒水莲含有多种化学成分,如皂苷、多糖、酚类、酮类、寡糖酯、有机酸等[6]。其中,多糖作为黄花倒水莲的活性成分之一能够提高机体的抗应激能力[5],也能提高正常小鼠的非特异性免疫和特异性免疫[7],此外黄花倒水莲多糖
(polysaccharideof损Polygala伤的小鼠fallax有保Hemsl.护作用,[8]PFP。
)还对四氯化碳致急性肝
基于此,本研究参照前期优选的提取工艺,对PF原活性Ps进行,以期提取为、分今离后对、纯化与PFPs表进行征,更并深评价入的研究与其体外抗氧开发化
利用提供理论依据。1材料与方法
1.1黄材料花倒与仪水器
莲根:桂林市六合路中药材市场;无水
乙醇、95%乙醇、三氯甲烷、正丁醇、苯酚、浓硫酸、维生素C(VC):西陇化工股份有限公司;三氟乙酸(triflu原oroaceticphenyl-3-acid2-三硝基methyl-5-pyrazalone,TFA)、1-苯基-3-甲苯肼(2,2-diphenyl,PMP基-5--1)-picrylhydrazyl、吡1,唑啉1-二酮苯(基1--DPPH盐[2),2、’2-azino-bis,2-联氮-2((3-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic
乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二铵
,
acid甘露),糖(ABTS]Man):、Sigma阿拉伯公司糖(;Ara葡萄)、糖半(Glc乳糖)(、鼠Gal李糖):(中国食Rha)、品药品检定研究院;葡聚糖凝胶G-75:上海蓝季科技发展有限公司。以上试剂均为国产分析统有限公司;CTFD-12S冷冻干燥机:纯。
BT224S精密分析电子天平北京:赛青多利岛永斯合仪创器系
信电
子科技有限公司;80-2B低速台式离心机:上海安亭科学仪器厂;HC-3618R高速冷冻离心机:安徽中科中佳科学仪器有限公司;N-1100旋转蒸发仪:上海爱朗仪20器有低温冷限公司却;SHB-循环泵芋:郑循环水州式长多用城科真工空贸泵有、DLSB-10/
BV1005-E漩涡混合限公司;A210049傅立叶变换红器外:线上光海谱柯淮仪:岛津仪器企有业限公司管理(中;国)有限公司;LC-20A高效液相色谱仪:日本岛津仪器公司1.2。1.2.1试验称取黄花方一倒法
定水量低温莲多糖干燥的提的取
黄花倒水莲粉末(14目),
无水乙醇回流脱脂3次(2h/次),过滤,药渣挥去乙醇。3以次30),过倍滤量蒸,合馏并水滤,液82并益减水压浴浓缩提,取在2.4浓缩h(重液中复加提入无取
水乙醇至醇浓度为90%,于4益的冰箱内静置过夜。取沉淀,经Sevag法除蛋白,活性炭脱色,冷冻干燥后1.2.2得到黄黄花花倒倒水水莲莲多多糖糖。
称取10g葡聚糖凝的胶纯化G-75于蒸馏水中加热溶
胀,装柱(直径2cm),用蒸馏水平衡后,称取黄花倒水莲多糖0.05g,溶于1mL蒸馏水中,上样,经蒸馏水洗脱(0.3mL/min),用具塞试管收集洗脱液(2mL/管),取其中0.2mL用苯酚-浓硫酸法检测多糖,绘制黄花倒水莲多糖的洗脱曲线。依照洗脱曲线合并洗脱液,冷1.2.3冻干燥分后子得量到测定
不同分子量的多糖组分。
多糖组分的分子量及其分布由凝胶渗透色谱法
测定(gelpermeationchromatography,GPC)。GPC色谱条件PWXL:LC20色谱泵柱,(RID-207.8mm示伊300差折mm光,检13测滋器m),,TSKgel流动相GM为
原0.06窄分布%的NaN葡3水溶液,流速为0.6mL/min,柱温为35益,1.2.4红外光聚谱糖(作infrared为标准spectrum物。
取黄花倒水莲多糖组分适量,,同IR)KBr测定混合研磨均
4匀000,压cm片后进行红外光谱分析,扫描范围为400cm-1-1。
~
基础研究
张小梅,等:黄花倒水莲多糖的纯化、表征与体外抗氧化活性研究
1.2.51.2.5.1PFP分别称取单1糖的标准单糖甘露溶液组成分糖、葡萄的配析
糖制
醛酸、
鼠李糖、葡萄糖、半乳糖、阿拉伯糖标准品10mg,配制成浓度为1.0mg/mL1.2.5.2的标准溶液PFP。
1的水解水3mol/L称取解4h的10。反应TFAmg结1PFP束mL后加,1密置入封于具氢,摇塞氧匀试化后管钠溶液置中,于调节105加入浓益pH油值浴度为中
为
中1.2.5.3性,1000分别移取单糖r/min标准离各单品心糖及10标准PFPmin,取上清液待用。溶液1水解产物的PMP衍生化
和PFP置1水解产物0.5mL,
0.5于具水浴mol/L塞试管中,依次加入0.3mol/L氢氧化钠0.5mL,加热的反应PMP1.5甲醇溶液h。反应结0.5束mL后,取涡出旋试混管匀冷后至于2570益益,
加入0.3mol/mL盐酸溶液0.5mL中和,涡旋混匀后,加入氯仿萃取,涡旋振荡2min,4500r/min离心10min,取上清液重复用氯仿萃取2次[9]。将萃取完的上清液liquid过0.45滋m滤膜,待高效液相色谱(highperformance1.2.5.4chromatography色谱色柱谱条件
,HPLC)进样测定。:AgilentTC-C流动相为0.05mol/mL磷酸盐缓18(4.6mm伊250mm,5滋m),
冲液(pH=6.8)-乙腈78颐22,体积比),流速为1.0mL/min,柱温35益,检测波1.2.6长21.2.6.1PFPnm,进样体积20滋L。参照文DPPH1体外抗氧献[10]自由,在基化试清除活性管中率依次的测定
加入3mL不同浓度
的DPPH黄花倒水莲多糖溶液与新鲜配制的1mL0.1后,于无517水nm乙醇溶液处测定其,摇吸匀光度,在。25以益V暗C作处为放置mmol/L阳性30对min照,
按下式计算DPPH自由基清除率:
清除率/%=[1原(A式中:Aii为加入多糖溶液原A或j)/AVoC时]伊的100
吸收值;A只加样品时的背景吸收值;Aj为
时的吸收值。
o为蒸馏水代替样品溶液
1.2.6.2参照文羟基自献[11]由,基在清除试管率中的依次测定
FeSO加入2mL1.8mmol/L
不同浓4溶液,1.5mL1.8mmol/L水杨酸乙醇溶液,1mL度黄花倒水莲多糖溶液,1mL0.3%H摇匀,在25益放置30min后于520nm处测定2O其2溶液,
吸光度。以抗坏血酸作为阳性对照,按下式计算羟基自由基清除率:
清除率/%=[1原(A式中:Aii为加入多糖溶液原A或j)/AVoC时]伊的100
吸收值;Aj为
53
只加样品时的背景吸收值;A馏水代替样品溶液
1.2.6.3时的吸收参考超值文氧。
o为蒸献阴[12]离子,在清除试管率中的依次测定
加入0.5mL不同浓
度的黄花倒水莲多糖溶液,5mL0.05mol/LTris-HCl缓冲液,在25益放置10min后加入0.2mL6mmol/L邻苯三酚,迅速摇匀,立即在315nm处每30s测定1次吸光度,共测4min。计算样品吸光度值随时间的变化率,以抗坏血酸作为阳性对照,按下式计算超氧阴离子自由基清除率:
清除率/%=[1原(A式中:Ai原Aj)/Ao]伊的100
吸收值;A只加样品时的i为加入多糖溶液或V背景吸收值;AC时j为
o为蒸馏水代替样品溶液
1.2.6.4时的吸收参考ABTS值。
垣自由基清除率的测定
2.45mmol/L文献K[13],分别配制7mmol/LABTS溶液与
mL,25益2S避2O8溶液,然后按1颐1体积比混合定容至25光反应15h,加蒸馏水稀释.7倍至其在734nm处吸光度为0.70依0.02后,30益保温备用。移取该溶液0.2mL至试管中,再加入5mL不同浓度黄花倒水莲多糖溶液,充分混合,避光25益反应6min后,于734nm处测量吸光度,以抗坏血酸作为阳性对照,按下式计算ABTS+自由基清除率:
清除率/%=[1原(A式中:Ai原Aj)/Ao]伊100
只加样品时的i为加入多糖溶液或V背景吸收值;AC时的吸收值;A水代替样品溶液
j为
时的吸收值。o为蒸馏2
2.1结果与分析
黄黄花花倒倒水水莲莲多多糖糖经的分G-75离纯葡化聚糖凝胶柱洗脱分离
后的曲线如图1。
1.51.00.50.0
01020
管数
304050
图1黄花倒水莲多糖的洗脱曲线
Fig.1ElutioncurveofrefinedPFPonSephadexG-75
chromatographycolumn
(
张小梅,等:黄花倒水莲多糖的纯化、表征与体外抗氧化活性研究
201510500
5
10
15
20
25
基础研究
PFP1来说,PFP2的质量极少,因此本研究只对PFP1进2.2分子量及其分布的测定
GPC分析结果见图2。行了表征和体外抗氧化活性测定。
然而,如图1,得到PFP1和PFP2两个组分。相对于
分散指数为1.32,表明经葡聚糖G-75凝胶柱层析后分离得到的PFP1具有很高的纯度。2.3IR分析
PFP1的IR见图3,其中具有典型的多糖吸收特
可知PFP1的分子量为20794Da,由图2可知,多
保留时间/min
30
征峰,包括3369cm-1处强而宽的O-H伸缩振动峰,1635cm-1处较强的C-O伸缩振动峰和1413cm-1C-H
150
图2PFP1的GPC色谱图
变角振动峰。
Fig.2GPCchromatogramofPFP1
100
50
0
37503000
波数/cm
2250
-1
1500750
图3PFP1的IR图Fig.3IRspectrumofPFP1
分离
2.4.1混合标准单糖和PFP1水解产物PMP衍生物的
混合标准单糖和PFP1水解产物PMP衍生物的
2.4PFP1的单糖组成分析
葡萄糖醛酸、鼠李留时间得出PFP1主要是由甘露糖、
标准单糖数量有限,仍有一种单糖种类未被确认。
糖、葡萄糖、半乳糖和阿拉伯糖组成。但是由于选取的2.4.2PFP1的单糖组成
HPLC色谱图见图4。
将标准单糖溶液制成一系列不同浓度的对照品
PMP衍生化后的产物有着很好的分离效果。经比较保
60050040030020010000
5
10
A
由图4可知,6种标准单糖以及PFP1水解后经
溶液,按1.2.5的步骤进行单糖衍生及色谱分析。以对照品溶液的浓度作为Y,相应的峰面积作为X进行拟
1
2
3
45
6
保留时间/min
15202530
基础研究
6005004003002001000
张小梅,等:黄花倒水莲多糖的纯化、表征与体外抗氧化活性研究
2
431
0
5
10
615
20
25
30
5
55
B
7
保留时间/min
A.混合标准单糖;B.PFP1水解产物;1.甘露糖;2.葡萄糖醛酸;3.鼠李糖;4.葡萄糖;5.半乳糖;6.阿拉伯糖;7.未知。
图4PMP衍生物的HPLC色谱图
Fig.4HPLCchromatogramsofderivativesofPMP
相关系数及线性范围,合,得到各单糖的回归方程、见表1。由PFP1中各单糖的峰面积,计算得PFP1的单糖组成摩尔比为:0.09颐1颐0.48颐0.颐0.71颐0.35。
表1各单糖的标准曲线
Table1Monosaccharidestandardcurve
单糖甘露糖葡萄糖醛酸鼠李糖葡萄糖半乳糖阿拉伯糖
回归方程Y=34862X垣1340Y=347X垣47323Y=33879X原499Y=37959X原35146Y=37779X原33304Y=52972X垣296
线性范围(/滋g/mL)相关系数
10~50010~50010~50010~50010~50010~500
0.99941.00001.00000.99981.00001.0000
1008060402000
2
4
6
8PFP
VC
B
浓度(/mg/L)
10C
1008060402000
2
4
6
8
10
12
2.5PFP1体外抗氧化活性
离子自由基和ABTS垣自由基的清除率结果见图5。
+
PFP1分别对DPPH自由基、羟基自由基、超氧阴由图5可知,PFP1对DPPH自由基、羟基自由基、
PFP
VC
超氧阴离子自由基和ABTS自由基均具有一定的清除能力,且呈现浓度依赖性关系,但其清除能力与阳性DPPH自由基的清除率达到最大值81%,而VC在浓度
1008060402000
2
4
6
8
10
PFP
VC
A
浓度(/mg/L)
14D
16
对照VC相比则较弱。当浓度为5mg/L时,PFP1对
1008060402000.0
0.5
1.0
1.5
2.0PFP
VC
为1mg/L时就达到最大清除率92%。对于羟基自由
浓度(/mg/L)
2.5
A.DPPH自由基;B.羟基自由基;C.超氧阴离子自由基;
D.ABTS垣自由基。
(n=3)图5PFP1对各自由基的清除率Fig.5ClearanceoffreeradicalsbyPFP1
浓度(/mg/L)
56
张小梅,等:黄花倒水莲多糖的纯化、表征与体外抗氧化活性研究
[3]
基础研究
率98.5%。对于超氧阴离子自由基,PFP1在浓度为15mg/L时,清除率达到最大值100.3%,而VC在浓度为5mg/L时达到最大清除率98.2%。对于ABTS垣自由基,PFP1的清除率达到最大值99.6%时的浓度为2.5mg/L,而VC达到最大清除率99.8%时的浓度则为0.25mg/L。3结论
本研究通过水提醇沉法获得PFP,经Sevag法脱蛋白、活性炭脱色以及葡聚糖凝胶-G75柱分离纯化获HPLC法对量大的PFP1组分进行表征分析。结果显示得2种PFP组分,分别用IR、GPC与柱前衍生PMP-其IR光谱中呈现多糖的典型特征吸收峰,分子量为
94.3%,而VC在浓度为0.5mg/L时就达到最大清除
基,PFP1在浓度为7.5mg/L时,清除率达到最大值
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收稿日期:2018-10-09
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